Team:SYSU-Software/Models2
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designer</span>& <span lang="EN-US">Riboswitch designer</span></h1> | designer</span>& <span lang="EN-US">Riboswitch designer</span></h1> | ||
<h2><span lang="EN-US">siRNA designer:<o:p></o:p></span></h2> | <h2><span lang="EN-US">siRNA designer:<o:p></o:p></span></h2> | ||
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Latest revision as of 07:16, 25 September 2012
Algorithm——SiRNA designer& Riboswitch designer
siRNA designer:
Tom Tuschl's rule (for
cDNA)
1. Select targeted region from a
given cDNA sequence beginning 50-100 nt downstream of start codon
2. Look for sequence motif
AA+N19+TT first. If there is no suitable sequence look 23-nt sequence
motif NA+N21 and convert the 3' end of the sense siRNA to TT
3. Or search for NAR+N17+YNN
PS: Target sequence should have
a GC content of around 50%
R means A/G, and Y means T/C.
Rational siRNA
design(for mRNA)
Evaluate potential candidates
and assign scores to them, sequences with higher scores will have higher
chance of success in RNAi.
The table below lists the 8
criteria and the methods of score assignment.
Criteria |
Description |
Score |
|
Yes |
No |
||
1 |
Moderate to
low (30%-52%) GC Content |
1 point |
|
2 |
At least 3
A/Us at positions 15-19 (sense) |
1 point
/per A or U |
|
3 |
Melting
temperature-Tm*<20℃ |
1 point |
|
4 |
A at
position 19 (sense) |
1 point |
|
5 |
A at
position 3 (sense) |
1 point |
|
6 |
U at
position 10 (sense) |
1 point |
|
7 |
No G/C at
position 19 (sense) |
|
-1 point |
8 |
No G at
position 13 (sense) |
|
-1 point |
The "anti-sense"
strand is the siRNA strand that is complementary to the target mRNA and
that will be binding to the mRNA.
The melting
temperature’ of a siRNA candidate can be calculated by the formula
showed below:
wA, xT, yG, zC are
separately the number of A, T, G, C in a siRNA candidate.
All siRNA candidates scored higher than 6 are acceptable.
Riboswitch designer:
The designer is
based on a special promoter working in eukaryotes - internal ribosome
entry site (IRES). We design the upstream sequence that can bind to IRES
part so the second structure of IRES can be transformed by the ligand.
Up regulated:
Target sequence is
assembled by five parts: MS-SL, aaIRES (anti-anti-IRES), aptamer, aIRES
(anti-IRES), IRES.
The IRES, aIRES,
aaIRES parts are settled, we get aptamer sequence according to
customer’s quests from aptamer database and the MS-SL is paired to the
combination part of aaIRES and aptamer. Then adjust the MS-SL part’s
length to fit it’s free energy to -11.7 kcal/mol.
Down regulated:
The differences
from down regulated to up regulated riboswitch are the order between
aptamer and aaIRES, the sequence of MS part. The new structure is showed
below:
We set MS to
“CCUCU” under experimental data and the aptamer still comes from aptamer
database.
Algorithm about free energy calculation comes
from Turner’s team:
Hairpin loops:
In this equation, n
(5) is the number of nucleotides in loop, the terminal mismatch
parameter is the sequence-dependent term for the first mismatch stacking
on the terminal base pair.
Watson-Crick
Helices:
Specific data can
be found on web site:
http://rna.urmc.rochester.edu/NNDB/turner04/index.html
References:
1.Elbashir SM et
al. (2001) Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in
cultured mammalian cells. Nature. 411:494-498.
2.Elbahir SM et al.
(2001). Functional anatomy of siRNAs for mediating efficient RNAi in
Drosophila melanogaster embryo lysate. EMBO J. 20:6877-6888.
3.Elbashir SM et
al. (2002). Analysis of gene function in somatic mammalian cells using
small interfering RNAs. Methods. 26:199-213.
4.Reynolds A, Leake
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5.Ogawa, A. (2011).
Rational design of artificial riboswitches based on ligand-dependent
modulation of internal ribosome entry in wheat germ extract and their
applications as label-free biosensors. RNA (New York, N.Y.), 17(3),
478-88. doi:10.1261/rna.2433111
6.Ogawa, A. (2012).
Rational construction of eukaryotic OFF-riboswitches that downregulate
internal ribosome entry site-mediated translation in response to their
ligands. Bioorganic & medicinal chemistry letters, 22(4), 1639-42.
Elsevier Ltd. doi:10.1016/j.bmcl.2011.12.118
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Mathews, D. H. (2009).
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Nucleic Acids Research.
38, D280-D282.